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12.2 : Deuterostome Lab (Préparation du matériel de l'instructeur) - Biologie

12.2 : Deuterostome Lab (Préparation du matériel de l'instructeur) - Biologie


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Matériel de laboratoire

C'est la préparation pour une section de 24 étudiants.

Échinodermes

Les élèves réaliseront cette partie en équipes de table (groupes de 4).

MatériauxQuantitéRemarques
modèle d'étoile de mer1 par table
exemple d'organismes échinodermes (conservés)diversceux-ci sont placés sur le banc latéral et peuvent inclure des étoiles de mer, des gorgones, des oursins, des concombres de mer

Accords

Les élèves réaliseront cette partie en équipes de table (groupes de 4).

MatériauxQuantitéRemarques
glissières à lancettes1 par tablepeut également être installé sur une banquette latérale en guise de démo
modèle de lancette1 par table
modèle de grenouille1 par table

Dissection

Les élèves feront cette partie en équipes de table (groupes de 4).

MatériauxQuantitéRemarques
kit de dissection1 par tabledevrait inclure un scalpel, des ciseaux, des pinces, des aiguilles de dissection, des broches de dissection
plateau de dissection1 par table
conteneur d'élimination des déchets1 par classeles organismes disséqués ne doivent pas aller à la poubelle ordinaire
des gants1 paire par élèvelatex et non latex (pour les allergies) en différentes tailles
blouse de laboratoire1 par étudiant
des lunettes de protection1 paire par élève
étoile de mer conservée1 par table
grenouille conservée1 par table

La vie : la science de la biologie

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Modifications de l'équipement et des fournitures

Question: « Que faut-il pour que le laboratoire d'oxygène dissous réussisse ? »

Réponse 1: "1. Eau très verte. Si nécessaire, cultivez-la dans un aquarium. 2. Beaucoup de lumière sans trop de chaleur. Les lampes fluorescentes sous le comptoir ou la configuration utilisée pour les plantes rapides devraient le faire. 3. Beaucoup de données de groupe— mes étudiants semblent toujours trouver de nouvelles façons d'ajouter des erreurs aux procédures, nous devons donc toujours « ignorer » certaines données, ce que nous ne pouvons faire que si nous avons suffisamment d'essais pour « écraser » l'essai aberrant évident. la biologie, et les organismes vivants sont des organismes vivants, peu importe leur taille. "Ici, au Texas, la meilleure eau verte vient du réservoir. Fonctionne comme un charme. Une culture de Chlorella est le meilleur pari pour la fabrication d'eau verte « intérieure ».
Israël Solon, Greenhill School, Dallas, Texas. 20/04/2099 et 21/04/2099

Réponse 2 : "J'ai obtenu des résultats fiables uniquement avec des cultures de Chlorella préparées commercialement (j'ai entretenu la mienne pendant deux ans jusqu'à présent). Mon eau d'aquarium très verte ne fonctionne jamais. Je pense qu'il y a trop d'eutrophisation et que les bactéries aspirent tout cet O2 Je laisse ma Chlorella devenir belle et verte sous un Gro-Lite fluorescent et elle doit être relativement exempte de bactéries par rapport à ma soupe aux pois, que je cultive dans un aquarium. Les données de ce laboratoire m'ont semblé assez erratiques au fil des années que je l'ai fait, mais le nouveau manuel est certainement une amélioration par rapport à l'ancienne procédure."
Charlotte Freeman, Girls Preparatory School, Chattanooga, Tennessee. 20/04/2099

Réponse 3 : "Instructions : Environ trois jours avant le laboratoire, diluez la culture dans 4 litres (ou 1 gallon) d'eau de source et ajoutez le milieu de culture d'algues. N'utilisez pas d'eau distillée, l'eau du robinet déchlorée fonctionnera. Gardez la culture sous une lumière modérée continue (fluorescent est idéal) pendant 72 heures ou plus à 25 degrés Celsius. Le jour du laboratoire, une masse verte d'algues de 1 à 2 pouces de profondeur devrait être présente au fond du récipient. Si vous avez besoin de la culture au début de la semaine , vous pouvez faire pousser l'algue pendant trois jours la semaine précédant l'expérience, puis la retirer de la lumière continue (la mettre dans une fenêtre) le week-end et l'utiliser la semaine suivante. Si vous ne pouvez pas faire pousser la culture sous une lumière continue, démarrez-la une semaine avant le laboratoire et laissez-le pousser dans une fenêtre.

"Recommandations : Le concentré AlgaGro doit être dilué. Utilisez un récipient transparent si possible. Gardez la source lumineuse à 18-24 pouces du récipient. Surveillez la température (22-25 degrés Celsius optimal). N'utilisez pas d'eau DISTILLEE (DI). Ne n'utilisez pas « EAU POTABLE ». Bien que ceux-ci puissent ressembler aux bidons d'un gallon d'eau de source trouvés dans les épiceries, les deux inhiberont la croissance de la chlorella [eau distillée = manque de minéraux et de nutriments en raison de l'élimination par échange ionique de l'eau potable = le chlore tue la chlorella]. J'ai parlé ici à Carolina semblent être d'accord sur le fait que l'eau utilisée est le coupable probable. Chlorella est un extrêmement bon « cultivateur ». Votre utilisation d'une lampe de culture à des intervalles de 12 heures n'est probablement pas significative. Veuillez surveiller la température de l'eau et vous assurer que de l'eau de qualité est utilisée. "
Pat Ryan, Carolina Biological Supply Company, Burlington, Caroline du Nord. 5/2/01

Réponse 4: "Je viens de faire ce laboratoire et il a été un succès. Je pense que vous ajoutez trop d'eau. J'ai utilisé deux tubes de Chlorella dans le support AlgaGro de Caroline et seulement un demi-gallon d'eau de source. Je l'ai gardé sous un éclairage fluorescent et les résultats etait bon." Jean Becker, Herricks High, New Hyde Park, New York. 5/2/01

Réponse 5 : "Transférez l'inoculat que vous avez reçu dans un plus petit volume d'eau de source stérile et d'AlgaGro. Je démarre mes cultures dans des flacons de 250-500 ml et les laisse pousser sous lumière continue. Lorsque la culture est dense, je transfère ensuite le plus grand volume dans un 4- flacon d'un litre de milieu. Cela peut prendre 4 à 5 jours pour atteindre la densité dont vous avez besoin dans le flacon de 4 litres. Pour des résultats plus rapides, essayez l'eau du bassin ou remplacez Elodea par la Chlorella.
—Gail Lima, The Winsor School, Boston, Massachusetts. 5/2/01

Réponse 6 : " J'ai appelé l'instructeur à l'Université de Clemson de l'AP Biology Institute et elle a suggéré de le mettre dans des récipients ouverts (grands béchers de taille égale). Je l'ai mis sous une table lumineuse fluorescente et j'ai eu une croissance en deux jours. . Elle pense que les nouvelles carafes d'eau de source ont un protecteur UV dans le plastique." Amy Litz, lycée de Summerville, Summerville, Caroline du Sud. 5/7/01

Réponse 7 : "Essayez une fenêtre ensoleillée ou utilisez des algues d'un étang local. Si cela échoue, vous pouvez utiliser n'importe quelle plante aquatique (Elodea) ou des algues filamenteuses." Scott Stein, Springside School, Philadelphie, Pennsylvanie. 5/2/01

Réponse 8 : « Utilisez des lentilles d'eau, cela fonctionne bien dans ce laboratoire, d'après mon expérience. »
Bruce Faitsch, Lycée Guilford, Guilford, Connecticut. 5/4/01


Voir la vidéo: Biologie science en mouvement (Juillet 2022).


Commentaires:

  1. Abell

    Beau blog, mais vaut la peine d'ajouter plus d'informations

  2. Dat

    Quelque chose ne réalise pas comme ça

  3. Aodhfin

    Je trouve que vous n'avez pas raison. Nous en discuterons.

  4. Eckerd

    Je peux vous donner une consultation pour cette question.

  5. Meshicage

    Yes, let's see



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