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De quel genre de larves s'agit-il ?

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Mon oncle nous aidait à pulvériser le garage contre les fourmis, et il est tombé sur un énorme lot de larves. Selon lui…

"Cela ressemblait à un long et étroit bloc de boue. Quand je l'ai ouvert, toutes ces larves sont tombées. Quels que soient les insectes qui se trouvaient à l'intérieur, ils se sont dispersés assez rapidement!"

  • Géographie: Nous sommes à Los Angeles, Californie (sud-ouest des États-Unis)
  • Saison: C'est la fin de l'été ici (début septembre)

Pièce A: Le tas de larves…

Pièce B : Une enveloppe similaire de "boue" trouvée dans notre garage. Quand il s'est brisé, rien n'est tombé...

Mon oncle pense que ce sont des termites… J'espère bien que non.


Je pense qu'il s'agit de larves de termites. Pour plus d'informations, consultez ceci : Les termites suivent le cycle de vie typique des insectes qui ont un cycle de vie progressif : ils commencent comme des œufs, puis entrent dans les stades nymphal à adulte. Dans le développement des termites, les termites nouvellement éclos sont parfois appelés « larves », ce qui ne doit pas être confondu avec les larves d'insectes à métamorphose complète comme les mouches.

Les larves de termites éclosent généralement en quelques semaines. Ils ont à peu près la même taille que les œufs dont ils ont éclos et sont immédiatement soignés par les termites ouvriers. Ils constituent souvent une grande partie d'une colonie de termites.

Comme les autres jeunes insectes, les larves de termites subissent une série de mues, au cours desquelles elles perdent leur peau. Dès le stade larvaire, les larves de termites peuvent évoluer vers d'autres membres des castes de la colonie.

Si vous pensez avoir une activité de termites dans ou à proximité de votre maison, contactez un professionnel de la lutte antiparasitaire. Les dommages causés par les termites peuvent passer inaperçus et entraîner des pertes financières importantes du fait de leurs dommages. Un inspecteur des termites peut inspecter une maison à la recherche de signes d'activité et de conditions attrayantes pour les termites. Ils peuvent également offrir des services pour traiter et protéger la maison contre d'éventuels dommages futurs.


De quel genre de larves s'agit-il ? - La biologie

Le sphinx du tabac, Manduca sexta (L.), est un ravageur courant des plantes de la famille des solanacées, qui comprend le tabac, la tomate, le poivron, l'aubergine et diverses plantes ornementales et adventices (del Campo et Renwick 1999). Les chenilles de la famille des Sphingidae sont connues sous le nom de hornworms, en raison de la forme de leur corps ressemblant à un ver et de la présence d'un petit & ldquohorn & rdquo pointu à leur postérieur (Figure 1). Le stade adulte de Manduca sexta est un papillon de nuit au corps lourd qui ressemble à un colibri, et Manduca les adultes sont communément appelés sphinx ou colibris (Figure 2). Le stade larvaire (sphinx) de cette espèce est plus souvent rencontré, car il réside sur la plante hôte pendant la journée et peut provoquer une défoliation importante des cultures économiquement importantes.

Figure 1. Manduca sexta (L.), le sphinx du tabac. Photographie de Lyle J. Buss, Université de Floride.

Figure 2. Manduca sexta (L.), le sphinx du tabac, adulte. La forme adulte de cette espèce est également connue sous le nom de sphinx de Caroline ou, généralement, de sphinx. Photographie de Lyle J. Buss, Université de Floride.

Cette espèce peut être confondue avec le sphinx de la tomate, Manduca quinquemaculata (Haworth), une espèce étroitement apparentée qui se nourrit également préférentiellement de plantes solanacées. Ces espèces peuvent être distinguées les unes des autres en comparant les marques sur le corps des larves et sur l'abdomen des adultes. En plus de son statut de ravageur, Manduca sexta est un organisme modèle important dans le domaine de l'entomologie, en particulier la physiologie des insectes (Koenig et al. 2015). Manduca sexta a été utilisé pour une série d'études importantes qui ont contribué à la compréhension de l'endocrinologie et du développement des insectes (Nijhout et Williams 1974, Bollenbacher et al. 1981). Plus précisément, cette espèce a été utilisée pour étudier les interactions entre les hormones endogènes et les signaux environnementaux qui signalent le développement à travers de multiples stades et le début de la nymphose (Riddiford et al. 2003).

Distribution (Retour en haut)

Le sphinx du tabac est présent partout aux États-Unis (du nord à la partie sud du Canada), en Amérique centrale et dans les Caraïbes (Cranshaw 2004). Cette espèce est plus couramment rencontrée dans les États du sud, mais son aire de répartition peut chevaucher le sphinx de la tomate étroitement apparenté, Manduca quinquemaculata, qui prédomine dans le nord des États-Unis (Cranshaw 2004).

Description (Retour en haut)

Des œufs: Les oeufs de Manduca sexta se déposent sur les feuilles de la plante hôte et éclosent un à trois jours après la ponte. Les œufs mesurent environ 1 mm de diamètre, sont de couleur verdâtre et légèrement irisés (Deel 1999).

Figure 3. Larve du premier stade de Manduca sexta (L.), le sphinx du tabac, consommant sa coquille après sa sortie. Photographie de Lyle J. Buss, Université de Floride.

Larves : Le nom commun sphinx du tabac fait référence aux stades larvaires de Manduca sexta les chenilles sont robustes et vert vif, avec des marques blanches à rayures diagonales et une petite saillie (le &ldquohorn&rdquo dans le sphinx) sur le dernier segment abdominal (Figure 4) (Cranshaw 2004). Manduca sexta les larves passent par quatre ou cinq stades, augmentant progressivement en taille jusqu'à environ 80 mm de longueur au dernier stade (Deel 1999, Campbell 2017). Le sphinx du tabac ressemble beaucoup au sphinx de la tomate, Manduca quinquemaculata (Figure 5), et leur aire de répartition et leurs plantes hôtes peuvent se chevaucher. Les marques corporelles et la coloration des cornes peuvent être utilisées pour distinguer les deux espèces. Le sphinx du tabac a des lignes diagonales blanchâtres sur le corps et une corne rougeâtre, tandis que le sphinx de la tomate a des marques en forme de V sur le corps et une corne noire (Cranshaw 2004).

Figure 4. Larve de dernier stade de Manduca sexta (L.), le sphinx du tabac. Photographie de James Castner, Université de Floride.

Figure 5. Larve de dernier stade de Manduca quinquemaculata (Haworth), le sphinx de la tomate. Photographie de John Capinera, Université de Floride.

Prénymphes et nymphes : À la fin du dernier stade larvaire, le sphinx entre dans ce qui est considéré comme le stade prénymphal. Cette étape est caractérisée par un comportement errant et la sélection d'un site de nymphose, suivis de la formation de la cellule nymphale sous la litière de feuilles ou le substrat du sol. Une fois la cellule nymphale excavée, le stade prénymphal passe au stade nymphal à mesure que la cuticule de l'insecte durcit et s'assombrit, formant la nymphe. La nymphe de Manduca sexta est une couleur brun rougeâtre foncé avec une boucle maxillaire à l'extrémité antérieure et une extrémité postérieure pointue (Figure 6 ) (Deel 1999). Selon la période de l'année et le nombre de générations (deux sont typiques dans la plupart des régions), l'hivernage peut avoir lieu à ce stade (Cranshaw 2004). Le sexe de Manduca sexta peut être déterminé en recherchant des marques sur les larves du cinquième stade, les prénymphes ou le cas de nymphe, ou l'adulte (Willott 2003).

Figure 6. Pupe de Manduca sexta (L.), le sphinx du tabac. Notez la boucle maxillaire (à droite). Les pupes se trouvent sous le sol ou profondément dans la litière de feuilles. Photographie de Lyle J. Buss, Université de Floride.

Adultes: Le stade adulte de Manduca sexta est un papillon robuste et agile connu sous le nom de papillon sphinx de la Caroline ou de sphinx du tabac (bien que la Société entomologique d'Amérique ne répertorie pas de nom commun approuvé pour le papillon adulte). Les adultes ont une envergure de 3,75 à 4,75 pouces (9,5 à 12 cm) car les ailes antérieures, les ailes postérieures sont petites en comparaison (Lotts et Naberhaus 2017). Les ailes ont un motif tacheté de blanc, de brun et de noir avec des bandes claires et foncées distinctes sur les ailes postérieures. Au repos, les ailes se replient donnant au papillon une forme triangulaire et lui fournissant un camouflage (surtout lorsqu'il se repose sur des arbres avec des lichens) (Figure 1). La teigne du sphinx de Caroline a six paires de taches orange jaunâtre (cinq grandes paires de taches, la paire la plus postérieure étant relativement petite) disposées verticalement sur l'abdomen brun grisâtre (Figure 7) l'adulte du sphinx de la tomate (Figure 8) est d'apparence similaire mais a cinq paires de taches jaune-orange (Cranshaw 2004, Lotts et Naberhaus 2017).

Les papillons adultes sont également appelés papillons colibris en raison de leur tendance à voler avec agilité entre les fleurs, planant au-dessus de chacun pour extraire le nectar avec leur longue trompe. Certains papillons nocturnes de la famille des Sphingidae sont considérés comme des pollinisateurs bénéfiques, un rôle écologique intéressant en contraste avec la nature destructrice des larves. Après l'éclosion (émergeant en tant qu'adulte du stade nymphal), les papillons sont crépusculaires (actifs à l'aube et au crépuscule) et obtiennent le nectar d'une variété de plantes à fleurs. Les femelles peuvent produire des œufs trois à quatre jours après l'émergence et l'accouplement, et chaque femelle peut produire de nombreux œufs (certaines sources disent jusqu'à 1 000) au cours de sa vie de plusieurs semaines (Deel 1999).

Figure 7. Forme adulte de Manduca sexta (L.), le sphinx du tabac, également connu sous le nom de sphinx de Caroline ou sphinx. Photographie de Lyle J. Buss, Université de Floride.

Figure 8. Forme adulte de Manduca quinquemaculata (Haworth), le sphinx de la tomate. Photographie de John Capinera, Université de Floride.

Description et cycle de vie (Retour en haut)

Le sphinx du tabac est un spécialiste des plantes solanacées, comme le poivre, le tabac et la tomate. Les plantes de la famille des solanacées contiennent des glycosides stéroïdiens et triterpénoïdes, des composés chimiques qui jouent un rôle important dans la biologie des Manduca sexta (Haribal et al. 2006). On a observé qu'un glycoside stéroïdien en particulier, l'indioside D, induisait une préférence alimentaire chez les larves naines, obligeant ces individus à se spécialiser uniquement sur le feuillage des solanacées (del Campo et al. 2001). Les papillons femelles sélectionnent les plantes pour la ponte en fonction d'indices chimiques, tels que l'odeur, détectés via leurs antennes (Reisenman et al. 2009, Spathe et al. 2013). Des études suggèrent que les papillons femelles ne pondront pas sur des plantes hôtes déjà nourries par des larves, détectant probablement un mélange de substances volatiles végétales libérées par la plante en réponse à l'alimentation (Reisenman et al. 2009, Spathe et al. 2013).

Comme mentionné précédemment, cette espèce a été largement utilisée comme organisme modèle dans des expériences liées au développement, à la génétique et au comportement des insectes. En laboratoire, ils peuvent être élevés avec succès avec un régime artificiel. Manduca sexta les larves élevées en laboratoire ne se nourrissent pas exclusivement de plantes solanacées, acceptant les tissus végétaux d'une variété d'autres plantes de différentes familles de plantes. Cependant, les chenilles élevées initialement avec un régime de solanacées étaient significativement moins susceptibles de se nourrir de feuilles non solanacées, même lorsqu'aucune autre option alimentaire n'était présentée (del Campo et al. 1999). Des études supplémentaires suggèrent que les signaux olfactifs sont complétés par des signaux gustatifs (basés sur le goût) dans Manduca sexta larves, et que la préférence alimentaire est en grande partie fonction des premières expériences d'alimentation (Glendinning et al. 2009).

Plantes hôtes (Retour en haut)

Les papillons adultes mâles et femelles se nourrissent du nectar de diverses plantes à fleurs. Les adultes sont actifs la nuit, ce qui renforce encore la conclusion selon laquelle les plantes hôtes larvaires sont localisées à l'aide de signaux chimiques plutôt que visuels (Reisenman et al. 2009).

Les plantes hôtes larvaires comprennent : Datura wrightii (Jimsonweed), Nicotiana attenuata (tabac sauvage), Proboscidea parviflora (griffe du diable) (Spathe et al. 2013), Lycopersicon esculentum (tomate) (Reisenman et al. 2009), Capsicum annuel (poivron) (Fraser et al. 2003), et Solanum tuberosum (pomme de terre) (de Campo et al. 2001).

Ces insectes se nourrissent uniquement de plantes solanacées, le plus souvent de tomate et de tabac. Ils ont été enregistrés sur d'autres légumes tels que l'aubergine, le poivron et la pomme de terre, mais cela est rare. Nombreuses Solanum spp. les mauvaises herbes servent d'hôtes. Les adultes s'imprègnent du nectar des fleurs d'un certain nombre de plantes et peuvent être vus planer autour des fleurs au crépuscule.

Dommages (Retour en haut)

Les stades larvaires de Manduca sexta sont des mangeurs voraces. Les larves se nourrissent en consommant les feuilles des plantes solanacées, arrachant souvent des feuilles entières jusqu'à la nervure médiane, défoliant les plantes (Figure 9). Bien qu'il soit considéré comme un ravageur commun des jardins, le sphinx du tabac peut causer des dommages économiques importants aux cultures de tabac et parfois aux cultures de tomates et de pommes de terre. Les larves peuvent se nourrir de fruits verts non mûrs, laissant de grandes blessures et exposant les fruits à des agents phytopathogènes opportunistes (Figure 10) (Cranshaw 2004).

Graphique 9. Dégâts d'alimentation sur le feuillage des tomates causés par Manduca sexta (L.), le sphinx du tabac. Photographie de James Castner, Université de Floride.

Figure 10. Dommages causés par l'alimentation aux jeunes tomates causées par Manduca sexta (L.), le sphinx du tabac. Photographie de James Castner, Université de Floride.

Gestion (Retour en haut)

Les sphinx du tabac peuvent être contrôlés de diverses manières et une gestion immédiate est recommandée si ce ravageur est détecté dans un jardin ou un champ. Dans les petites exploitations, comme un jardin potager, la cueillette à la main et la destruction des chenilles est un moyen efficace de réduire la population. Cette méthode de contrôle cultural nécessite un dépistage régulier des espèces de plantes solanacées, à la recherche de signes de dommages causés par l'alimentation. Les chenilles elles-mêmes peuvent être difficiles à voir sur le feuillage vert de la plante hôte, il faut donc surveiller attentivement la défoliation ou la présence d'excréments (Figure 11) peuvent être de meilleures indications de la présence de chenilles.

Figure 11. L'excrément sur la plante hôte peut être une indication de l'alimentation par Manduca sexta (L.), sphinx du tabac. Photographie de James Castner, Université de Floride.

Le contrôle biologique est une autre méthode de gestion, utilisant Bacillus thuringiensis (Bt), une bactérie du sol naturelle qui produit une protéine qui agit comme une endotoxine mortelle lorsqu'elle est consommée par les larves de lépidoptères (et les larves de certains autres taxons d'insectes). Ce produit est largement disponible et sans danger pour une utilisation autour des insectes pollinisateurs, car il doit être consommé pour être efficace. De plus, le Bt peut être utilisé dans les opérations de culture biologique. Ce pesticide est plus efficace sur les larves de stades précoces, car une plus petite quantité doit être consommée pour un contrôle efficace.

Les sphinx du tabac ont plusieurs ennemis naturels, notamment des espèces de vertébrés qui se nourrissent de chenilles, comme les oiseaux et les petits mammifères, et des insectes comme les larves de chrysope et de coccinelle qui consomment les œufs et les larves de stade précoce. Les guêpes sont un prédateur commun des sphinx. Les guêpes à papier et autres insectes qui fournissent des proies à leurs petits prendront les sphinx de la plante hôte, les paralyseront et les placeront dans les cellules du nid contenant les œufs de guêpes comme future source de nourriture. Les guêpes parasitoïdes, comme Cotesia congregata, utilisent les sphinx comme source de nourriture pour leurs jeunes en développement. Ces guêpes déposent leurs œufs à l'intérieur du corps du sphinx et les larves de guêpes se développent dans la chenille, s'en nourrissant au fur et à mesure de leur cycle de vie. Lorsque la nymphose a lieu, les guêpes immatures tissent de petits cocons blancs et soyeux qui dépassent du corps de la chenille encore vivante (Figure 12) (Crockett et al. 2014). Les sphinx couverts de cocons sont un spectacle de grand intérêt dans le jardin, et beaucoup craignent que les chenilles parasitées aient un impact négatif sur leur jardin. En fait, le contraire est vrai car le sphinx finira par mourir et plusieurs guêpes adultes émergeront, s'accoupleront et rechercheront des hôtes supplémentaires pour leurs œufs.

Figure 12. Larve de stade avancé de Manduca sexta (L.), le sphinx du tabac, qui a été parasité par une guêpe parasitoïde. Remarquez les cocons blancs et soyeux qui dépassent du corps de la chenille. Photographie de Lyle J. Buss, Université de Floride.

Il existe un certain nombre d'insecticides chimiques pour lutter contre le sphinx du tabac et d'autres chenilles. Pour des recommandations spécifiques, contactez votre bureau de vulgarisation du comté local. Lors de l'utilisation de tout produit chimique, qu'il soit de nature biologique ou synthétique, il est de la loi de suivre les instructions de l'étiquette et les précautions pour la sécurité et l'adéquation du ravageur et de la culture.

Références sélectionnées (Retour en haut)

  • Bollenbacher WE, Smith SL, Goodman W, Gilbert LI. 1981. Titre d'ecdystéroïde pendant le développement larvaire-pupe-adulte du sphinx du tabac, Manduca sexta. Endocrinologie générale et comparative 44 : 302-306.
  • Campbell D. (2017). Manduca sexta, papillon sphinx de la Caroline. Encyclopédie de la vie. (1er octobre 2017)
  • Cranshaw W. 2004. Sphinx/Sphinx. Insectes de jardin d'Amérique du Nord : Le guide ultime des insectes d'arrière-cour. Princeton University Press, Princeton, New Jersey, États-Unis. p. 146-149.
  • Crockett CD, Lucky A, Liburd OE. (2014). Cotesia congregata (Dites), une guêpe parasitoïde. Document sur les créatures en vedette UF/IFAS EENY-598. (2 octobre 2017)
  • Deel S. (1999). Sphinx du tabac. Research Link 2000, Carleton College, Northfield, Minnesota, États-Unis. (1er octobre 2017)
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  • Fraser AM, Mechaber WL, Hildebrand JG. 2003. Réponses électroantennographiques et comportementales du papillon sphinx Manduca sexta pour héberger les volatiles de l'espace de tête de la plante. Journal d'écologie chimique 29 : 1813-1833.
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  • Willott E. (2003). Comment faire l'amour Manduca larves et pupes. L'Université de l'Arizona. (2 octobre 2017)

Auteurs : Morgan A. Byron et Jennifer L. Gillett-Kaufman, Département d'entomologie et de nématologie, Université de Floride
Photographies : Lyle J. Buss et James Castner, Département d'entomologie et de nématologie, Université de Floride
Conception Web : Don Wasik, Jane Medley
Numéro de publication : EENY-692
Date de parution : octobre 2017


La biologie

L'anisakiase est causée par l'ingestion de larves de plusieurs espèces de nématodes ascaridoïdes (vers ronds), qui sont parfois appelés &ldquoherringworm&rdquo, &ldquocodworm&rdquo, ou &ldquosealworm&rdquo, dans des poissons marins insuffisamment cuits. Les espèces connues d'anisakidés infectant l'homme comprennent des membres de la Anisakis simplex complexe [A. simplex sensu stricto, A. pegreffii, A. berlandi (=A. simplex C)], le Pseudoterranova decipiens complexe (P. decipiens sensu stricto, P. azarasi, P. cattani, et autres), et le Contracecum osculatum complexe. Des études génétiques récentes ont révélé une grande diversité au sein de ces groupes d'anisakidés, suggérant que d'autres espèces cryptiques sont probablement représentées dans les infections zoonotiques.

Cycle de la vie:

Les stades adultes des nématodes anisakidés résident dans l'estomac des mammifères marins, où ils sont incrustés dans la muqueuse en grappes. Les œufs non embryonnés produits par les femelles adultes sont rejetés dans les excréments des mammifères marins . Les œufs s'embryonnent dans l'eau et subissent deux mues de développement , et éclosent des œufs sous forme de larves gainées de troisième stade (L3) nageant librement . Ces larves nageant librement sont ensuite ingérées par les crustacés . Les larves ingérées se développent dans l'hémocèle du crustacé et deviennent infectieuses pour les poissons et les céphalopodes hôtes paraténiques. Après s'être attaquées aux crustacés infectés, les larves L3 digérées migrent de l'intestin paraténique de l'hôte vers la cavité abdominale, et finalement vers les tissus des mésentères et du muscle squelettique. Par la prédation, les larves L3 au stade tissulaire peuvent être transmises entre les hôtes paraténiques . Les poissons et les calmars entretiennent des larves L3 qui sont infectantes pour les humains et les mammifères marins .

Lorsque des poissons ou des calmars contenant des larves de troisième stade sont ingérés par des mammifères marins hôtes définitifs, les larves muent deux fois et se transforment en vers adultes . Après ingestion par l'homme, les larves d'anisakidés pénètrent dans la muqueuse gastrique et intestinale, provoquant les symptômes de l'anisakiase .


Que sont les larves ? (Avec des photos)

Une larve est une forme juvénile d'un animal qui diffère considérablement par sa morphologie corporelle et ses organes internes de l'organisme adulte. Par exemple, une chenille est la forme larvaire d'un papillon. En revanche, les humains juvéniles sont à peu près les mêmes que les humains adultes, mais plus petits. Un stade larvaire est courant chez les insectes, les poissons, les amphibiens, les crustacés et certains mollusques, échinodermes, annélides et autres. Certaines espèces évoluent en fait vers une forme exclusivement larvaire et y restent. Le processus de transformation d'une larve en un adulte est appelé métamorphose.

Le stade larvaire est un tremplin vers l'âge adulte pour ces animaux. Il y a divers avantages évolutifs à avoir un stade larvaire : généralement, le stade est mieux optimisé pour sa petite taille et son appétit. Cela est particulièrement vrai pour les espèces animales qui ont tendance à avoir une stratégie évolutive de "quantité sur qualité" - dans certains cas, ce serait un gaspillage de produire directement des milliers d'adultes, car beaucoup d'entre eux mourraient de toute façon, et seraient plus énergétiques. -faim que les formes larvaires. La forme larvaire donne à ces animaux une "période d'essai" - un moyen à faible énergie d'entrer dans le jeu de la vie. Si la forme larvaire recueille suffisamment de nourriture, soit par ses propres efforts, soit avec l'aide d'adultes, elle mérite de passer à la forme adulte et, généralement, de pouvoir produire sa propre progéniture.

Les larves portent des noms différents selon l'animal auquel elles sont associées. Ils ont souvent un aspect gras ressemblant à un ver (surtout chez les insectes), parfois une version plus petite de l'adulte mais avec des différences morphologiques importantes. La variation des formes larvaires est presque aussi grande que la variation des formes adultes dans lesquelles elles se développent. La plupart des larves de crustacés sont appelées nauplius, les larves de homard sont des zoées, les vraies larves de punaises sont des nymphes, les larves de libellules sont des naïades, les coléoptères, les abeilles et les guêpes ont des larves, les mouches ont des asticots, les larves de moustiques sont appelées wigglers, certains mollusques et annélides appelés trochophores, les papillons et les mites ont des chenilles, les larves d'anguille sont appelées leptocéphales, les amphibiens ont des têtards et les larves de poisson sont simplement appelées larves.

Les larves peuvent être stationnaires, presque comme un fœtus, comme les larves de guêpe, qui subsistent grâce à la nourriture ramenée au nid par les adultes. D'autres larves sont des prédateurs ou des parasites actifs, comme les larves de botfly, qui infectent les humains. Pour les insectes, les larves sont souvent déposées dans les ordures ou dans l'eau stagnante. Pour lutter contre les insectes, il peut être utile d'attaquer le stade larvaire plutôt que les adultes eux-mêmes. Par exemple, pour éliminer les moustiques, il est conseillé de drainer les flaques d'eau stagnante, où les larves sont déposées. Cette stratégie est poursuivie depuis des décennies dans le monde entier. Un exemple particulièrement efficace a été celui de la construction du canal de Panama, où un programme efficace de lutte antiparasitaire a presque éliminé le risque de paludisme pour les travailleurs du canal.

Michael est un contributeur de longue date d'InfoBloom spécialisé dans les sujets liés à la paléontologie, la physique, la biologie, l'astronomie, la chimie et le futurisme. En plus d'être un blogueur passionné, Michael est particulièrement passionné par la recherche sur les cellules souches, la médecine régénérative et les thérapies de prolongation de la vie. Il a également travaillé pour la Fondation Mathusalem, le Singularity Institute for Artificial Intelligence et la Lifeboat Foundation.

Michael est un contributeur de longue date d'InfoBloom spécialisé dans les sujets liés à la paléontologie, la physique, la biologie, l'astronomie, la chimie et le futurisme. En plus d'être un blogueur passionné, Michael est particulièrement passionné par la recherche sur les cellules souches, la médecine régénérative et les thérapies de prolongation de la vie. Il a également travaillé pour la Fondation Mathusalem, le Singularity Institute for Artificial Intelligence et la Lifeboat Foundation.


De nombreux agents de lutte biologique indigènes se nourrissent de sphinx en Caroline du Nord, et ces prédateurs et parasites jouent un rôle actif dans la réduction des dommages causés par les sphinx. Les parasitoïdes de sphinx les plus évidents sont Cotesia congregata. Ces guêpes pondent leurs œufs à l'intérieur des larves de sphinx du premier au troisième stade. Au fur et à mesure que les chenilles mûrissent, les larves de guêpes grandissent aussi. Les larves de guêpe émergent ensuite du sphinx du quatrième ou du cinquième stade et se nymphosent dans des cocons blancs sur le dos. Un sphinx parasité mange environ 1/5 de celui d'un ver non parasité.

Ce sphinx était parasité par des guêpes braconides. Bien que les corps blancs ressemblent à des « œufs », ce sont en fait de minuscules cocons de guêpes. Photo : Demetri Tsiolkas

Punaise des échasses adultes et nymphes (Jalysus spinosus) se nourrissent à la fois d'œufs de tordeuse des bourgeons du tabac et de sphinx. De nombreuses espèces de guêpes (Polistes spp.) utilisent des sphinx et d'autres chenilles comme nourriture pour leurs larves. Les parasites des mouches tachinides (Winthémie spp. et Archytas marmoratus) attaquent également les sphinx, les tuant au stade nymphal.

Plus d'information


La thérapie par les asticots améliore la guérison des ulcères chroniques. [1] Dans les ulcères du pied diabétique, il existe des preuves provisoires d'un bénéfice. [3] Une revue Cochrane des méthodes de débridement des ulcères de jambe veineux a révélé que la thérapie par les asticots était globalement aussi efficace que la plupart des autres méthodes, mais l'étude a également noté que la qualité des données était médiocre. [4]

En 2004, la Food and Drug Administration (FDA) des États-Unis a éliminé les asticots de la mouche verte commune pour les utiliser comme « dispositif médical » aux États-Unis dans le but de traiter : [5]

  • Plaies nécrotiques de la peau et des tissus mous ne cicatrisant pas
  • Plaies traumatiques ou post-chirurgicales non cicatrisantes

Limitations Modifier

La plaie doit être d'un type qui peut bénéficier de l'application de la thérapie par les asticots. Une plaie humide et exsudative avec un apport suffisant en oxygène est une condition préalable. Tous les types de plaies ne conviennent pas : les plaies sèches ou les plaies ouvertes des cavités corporelles ne fournissent pas un bon environnement pour que les asticots se nourrissent. Dans certains cas, il peut être possible de rendre une plaie sèche adaptée à la thérapie larvaire en l'humidifiant avec une solution saline. [6]

Les patients et les médecins peuvent trouver les asticots déplaisants, bien que des études aient montré que cela n'incite pas les patients à refuser l'offre de thérapie contre les asticots. [7] Les asticots peuvent être enfermés dans des sacs en polymère opaques pour les cacher de la vue. Les pansements doivent être conçus pour empêcher les asticots de s'échapper, tout en permettant à l'air d'atteindre les asticots. [8] Les pansements sont également conçus pour minimiser la sensation de chatouillement inconfortable que les asticots provoquent souvent. [9]

Les asticots ont quatre actions principales :

  • Débridement [10]
  • Désinfection de la plaie [11]
  • Stimulation de la guérison [11]
  • Inhibition et éradication du biofilm [12]

Débridement Modifier

Dans le traitement des asticots, un grand nombre de petits asticots consomment le tissu nécrotique beaucoup plus précisément qu'il n'est possible dans une opération chirurgicale normale, et peuvent débrider une plaie en un jour ou deux. La superficie de la surface d'une plaie est généralement augmentée avec l'utilisation d'asticots en raison de la surface non débridée ne révélant pas la taille sous-jacente réelle de la plaie. Ils dérivent des nutriments par un processus connu sous le nom de « digestion extracorporelle » en sécrétant un large spectre d'enzymes protéolytiques [13] qui liquéfient les tissus nécrotiques et absorbent le résultat semi-liquide en quelques jours. Dans un environnement de plaie optimal, les asticots muent deux fois, leur longueur passant d'environ 2 mm à environ 10 mm, et leur circonférence, dans un délai de 48 à 72 heures en ingérant du tissu nécrotique, laissant une plaie propre exempte de tissu nécrotique lorsqu'ils sont retirés . [14]

Désinfection Modifier

Les sécrétions des asticots dont on pense qu'elles ont une activité antimicrobienne à large spectre comprennent l'allantoïne, l'urée, l'acide phénylacétique, le phénylacétaldéhyde, le carbonate de calcium, les enzymes protéolytiques et bien d'autres. [15] In vitro des études ont montré que les asticots inhibent et détruisent un large éventail de bactéries pathogènes, y compris résistantes à la méthicilline Staphylococcus aureus (SARM), les streptocoques des groupes A et B et les souches aérobies et anaérobies à Gram positif. [16] D'autres bactéries comme Pseudomonas aeruginosa, E. coli ou Protée spp. ne sont pas attaqués par les asticots, et en cas de Pseudomonas même les asticots sont en danger. [17]

Biologie des asticots Modifier

Les mouches dont les larves se nourrissent d'animaux morts pondent parfois leurs œufs sur les parties mortes (tissus nécrotiques ou gangrenés) d'animaux vivants. L'infestation par les asticots d'animaux vivants est appelée myiase. Certains asticots se nourrissent uniquement de tissus morts, d'autres uniquement de tissus vivants et d'autres de tissus vivants ou morts. Les mouches utilisées le plus souvent pour le traitement des asticots sont les mouches à viande des Calliphoridae : l'espèce de mouche à viande la plus couramment utilisée est Lucilia sericata, la mouche verte commune. Une autre espèce importante, Protophormia terraenovae, est également remarquable pour ses sécrétions alimentaires, qui combattent l'infection par Streptocoque pyogène et S. pneumoniae. [18]

Des documents écrits ont documenté que les asticots ont été utilisés depuis l'antiquité comme traitement des plaies. [19] Il existe des rapports sur l'utilisation d'asticots pour la cicatrisation des plaies par les Mayas, les Amérindiens et les tribus aborigènes en Australie. Le traitement des asticots a été signalé à l'époque de la Renaissance. Les médecins militaires ont observé que les soldats dont les blessures avaient été colonisées par des asticots présentaient une morbidité et une mortalité significativement inférieures à celles des soldats dont les blessures n'avaient pas été colonisées. Ces médecins comprenaient le chirurgien général de Napoléon, le baron Dominique Larrey. Larrey a rapporté lors de la campagne égyptienne de la France en Syrie (1798-1801) que certaines espèces de mouches ne consommaient que des tissus morts et aidaient les plaies à cicatriser. [18]

Joseph Jones, un médecin confédéré de haut rang pendant la guerre de Sécession, a déclaré :

J'ai souvent vu des blessures négligées. rempli d'asticots. pour autant que mon expérience s'étende, ces vers ne mangent que des tissus morts et ne blessent pas spécifiquement les parties du puits. pendant la guerre de Sécession que « Magots . en une seule journée nettoierait une plaie bien mieux que n'importe quel agent dont nous disposions. Je suis sûr que j'ai sauvé de nombreuses vies grâce à leur utilisation.

Il a enregistré un taux de survie élevé chez les patients qu'il traitait avec des asticots. [20]

Pendant la Première Guerre mondiale, le chirurgien orthopédiste William S. Baer a enregistré le cas d'un soldat resté plusieurs jours sur le champ de bataille qui avait subi des fractures complexes du fémur et de larges blessures à la chair. Le soldat est arrivé à l'hôpital avec des asticots infestant ses blessures mais n'avait pas de fièvre ou d'autres signes d'infection et a survécu à ses blessures, qui auraient normalement été mortelles. Après la guerre, Baer a commencé à utiliser la thérapie par les asticots à l'hôpital pour enfants de Boston dans le Massachusetts. [21] [22] : 169–71

Il a été rapporté que les prisonniers de guerre américains des Japonais pendant la Seconde Guerre mondiale ont eu recours à la thérapie par les asticots pour traiter les blessures graves. [23] [24]

Une enquête auprès des médecins de l'armée américaine publiée en 2013 a révélé que 10 % d'entre eux avaient utilisé la thérapie par les asticots. [25]

En janvier 2004, la FDA a autorisé la production et la commercialisation d'asticots destinés à être utilisés chez l'homme ou l'animal en tant que dispositif médical délivré sur ordonnance uniquement pour les indications suivantes : ulcères, ulcères neuropathiques du pied et plaies traumatiques ou post-chirurgicales non cicatrisantes. [26] [27]

L'utilisation d'asticots pour nettoyer les tissus morts des blessures animales fait partie de la médecine traditionnelle dans de nombreuses régions du monde. [28] Il est particulièrement utile en cas d'ostéomyélite chronique, d'ulcères chroniques et d'autres infections productrices de pus qui sont fréquemment causées par le frottement dû à l'équipement de travail. [ citation requise ] La thérapie par les mouches pour les chevaux aux États-Unis a été réintroduite après une étude publiée en 2003 par le vétérinaire Dr Scott Morrison. Cette thérapie est utilisée chez les chevaux pour des affections telles que l'ostéomyélite secondaire à la fourbure, les abcès sous-solaires conduisant à l'ostéomyélite, le traitement post-chirurgical de la procédure de clou de rue pour les plaies perforantes infectant la bourse naviculaire, le chancre, les ulcères non cicatrisants sur la grenouille, et le nettoyage du site post-chirurgical pour l'élimination du kératome. [29]

Cependant, il n'y a pas eu beaucoup d'études de cas réalisées avec la thérapie de débridement des asticots sur les animaux, et en tant que telle, il peut être difficile d'évaluer avec précision son efficacité. [30]


De quel genre de larves s'agit-il ? - La biologie

Le porteur de cas domestique, Phéréoeca utérine, est un papillon de la famille des Tineidae des lépidoptères. De nombreuses espèces de cette famille sont porteuses de cas et quelques-unes sont des parasites d'intérieur des fibres capillaires, des laines, des soies, du feutre et des matériaux similaires. La plupart des gens connaissent cette espèce sous le nom de ver à sac de plâtre. Cependant, les vers de sac sont des papillons nocturnes de la famille des Psychidae. C'est peut-être pour cette raison que le nom commun accepté de Phéréoeca utérine est maintenant répertorié comme porteur de cas domestique, au lieu du ver du sac de plâtre (Bosik JJ, et al. 1997).

Figure 1. Une larve du porte-case domestique, Phéréoeca utérine Walsingham, which is partially emerged from its case and using its true legs to walk on a surface. Photographie de Lyle J. Buss, Université de Floride.

The cases are constructed by the larval (caterpillar) stage and often attract attention when found in homes. However, we usually see only the empty larval or pupal cases of the household casebearer on walls of houses in south and central Florida.

Taxonomie (Retour en haut)

The first record of this species came from Lord Walsingham in 1897 (Busck, 1933). However, the specimens that he collected from the Virgin Islands were misidentified.

In 1933, August Busck proposed the name Tineola walsinghami for the Virgin Island insects of Walsingham. The same year Kea wrote about the food habits of the species present in Florida, using the name given by Walsingham (Tineola uterella). After a while, the species in the peninsula was recognized as Tineola walsinghami. In 1956, Hinton and Bradley described the new genus Phereoeca, in order to separate the true Tineola from this and other species of flat case-bearing moths.

Finally, an early synonym established by Meyrick was recognized as the most appropriate name, and the species was named Phereoeca dubitatrix (Meyrick 1932). However, another name change occurred and the current official common and scientific names for this species are the household casebearer, Phéréoeca utérine Walsingham.

Distribution (Retour en haut)

The household casebearer, Phéréoeca utérine, requires high humidity to complete its development, a limiting factor for its dispersion throughout the rest of the country. Hetrick (1957) observed the insect in many parts of Florida and Louisiana, as well as USDA records of the household casebearer from Mississippi and North Carolina. He also assumed that this species might be present in the coastal areas of Alabama, Georgia, South Carolina, Texas and Virginia. However, proper identification by a specialist is advised, because case-bearing species other than Phéréoeca utérine might be in those states.

In South America, Phéréoeca utérine Walsingham is known to be present in Brazil (state of Para) and Guyana.

Another related species of case-bearing moths is Praececodes atomosella (tecophora) (Walker 1863). It was found in Gainesville, Florida, and has been recorded as present in the southern USA, Hawaii, Mexico, Bermuda, Brazil, Peru, Venezuela, Europe, Africa, Malaya, Australia and other localities. It is possible that records of Phéréoeca utérine might be misidentified as this species or vice versa.

Due to the active international exchange of goods, other case-bearing moths may occur in Florida in the future. Par exemple, Phereoeca allutella (Rebel) has been recorded in Hawaii, Panama, Canary Islands, Madeira, Sierra Leone, Seychelles, Sri Lanka, India, Java and Samoa.

Description (Retour en haut)

Egg: After mating, females lay their eggs on crevices and the junction of walls and floors, cementing them on debris. Two hundred eggs may be oviposited by a single female over a period of a week, after which she dies. Eggs are soft, pale bluish, and about 0.4 mm in diameter.

Larva: The larva is not usually seen by most people. The case that it carries around wherever it feeds is what is immediately recognized. It can be found under spiderwebs, in bathrooms, bedrooms and garages. Cases can be found on wool rugs and wool carpets, hanging on curtains, or underneath buildings, hanging from subflooring, joists, sills and foundations on the exterior of buildings in shaded places, under farm sheds, under lawn furniture, on stored farm machinery and on tree trunks.

The larval case is a slender, flat, fusiform or spindle-shaped case which resembles a pumpkin seed. It is silk-lined inside and open at both ends. Most of the biology described here was taken from Aiello's (1979) description of Phereoeca allutella, a closely related case-bearing moth species from Panama. Specific information of Phereoeca uterella biology is limited.

The case is constructed by the earliest larval stage (1st instar) before it hatches, and is enlarged by each successive instar. In constructing the case, the larva secretes silk to build an arch attached at both ends to the substrate. Very small particles of sand, soil, iron rust, insect droppings, arthropod remains, hairs and other fibers are added on the outside. The inside of the arch is lined exclusively by silk, and is gradually extended to form a tunnel, while the larva stays inside. The tunnel is closed beneath by the larva to form a tube free from the substrate, and open at both ends. After the first case is completed, the larva starts moving around, pulling its case behind. With each molt, the larva enlarges its case. Later cases are flattened and widest in the middle, allowing the larva to turn around inside. A fully developed larva has a case 8 to 14 mm long and 3 to 5 mm wide.

Figure 2. Case of household casebearer, Phéréoeca utérine Walsingham. Photographie de Lyle J. Buss, Université de Floride.

Both ends of the case are identical, and are used by the larva to hide. When disturbed, it encloses itself in the case by pulling the bottom side up. This closing mechanism is very difficult to open from the outside.

The fully developed larva is about 7 mm long. It has a dark brown head, and the rest of the body is white, except for the lateral and dorsal plates on the three thoracic segments close to the head, which are hardened and dark. Aiello (1979) believes the plates protect the larva from natural enemies when it reaches out of its case for locomotion.

The larva has three pair of well-developed, brown legs. The ventral prolegs are white, and are located on abdominal segments 3 to 6 and 10. At the tip of each proleg there is an ellipse formed by 23 to 25 very small crochets (a small hook). The anterior crochets are bigger and broader than posterior ones by one third, which is a good detail for identification. The crochets are used to walk inside the case, and also to grab the case when the larva pulls its head and thorax out and uses its true legs to walk on the floor or walls.

Pupa: Pupation occurs inside the case. The larva walks up a vertical surface and attaches the case at both ends with silk. One end of the case is then modified. The larva cuts a short slit along both edges to make that end flatter, which acts as a valve. Before eclosion the pupa pulls itself halfway through the valve. The new moth emerges around noon, leaving the pupal case exposed on the outer case.

Adult: Adult females have a wing span 10 to 13 mm long. They are gray with up to four spots on the fore wings, and a brush of long, lighter gray hair-like scales along the posterior margin of the hind wings. Males are smaller (wing span: 7 to 9 mm) and thinner than the female, with a less distinctive wing pattern.

Figure 3. Adult female household casebearer, Phéréoeca utérine Walsingham. Photographie de Lyle J. Buss, Université de Floride.

Figure 4. Adult male household casebearer, Phéréoeca utérine Walsingham. Photograph by Juan A. Villanueva-Jiménez, University of Florida.

The heads of both sexes are uniformly clothed with dense, rough hairs. There are two pairs of buccal appendages called palps. The maxillary palps are smaller than the labial palps, and are folded inwards. The labial palps extend a little beyond the head vestiture (dense covering of hairs). The remaining mouth parts are reduced and adults do not feed. The antennae are filiform (threadlike), as long as the wings, and are held back over the body. The compound eyes are prominent.

Figure 5. Head of adult household casebearer, Phéréoeca utérine Walsingham. Photograph by Juan A. Villanueva-Jiménez, University of Florida.

Wing venation is very important for genera identification, and was described by Hinton and Bradley in 1956. Adults at rest hold their wings tented over the body. They fly fairly well, but usually rest on walls, floor edges, or on webs of house spiders (theridiids) (Aiello 1979).

Life Cycle (Back to Top)

At non-air-conditioned room temperature in Panama, the life cycle of Phereoeca uterella (a close relative of Phereoeca dubitatrix) was reported by Aiello (1979) as follows:

Eggs require more than 10 days to hatch. There are six to seven larval instars that require about 50 days to mature. They remain in the pupal stage an average of 15.6 days (range of 11 to 23 days). The entire cycle from egg to adult averages 74.2 days (62 to 86 days). Aiello (1979) indicates that the number of instars may vary among individuals of both sexes.

Economic Significance (Back to Top)

Hetrick (1957) found that the most common and abundant food of the household casebearer in Florida is old spider webs, consumed in large quantities. Webs of insects such as booklice (Psocoptera) and webspinners (Embioptera) from tree trunks were also suitable food. Old cases of its own species were chewed as well. Kea (1933) could not observe this insect feeding on dried insects in the laboratory, even though small portions of dried insects were found attached to its case. Furthermore, household casebearer larvae did not eat cotton products offered by Kea. But when woolen threads and woolen cloth were offered to the larvae "they ate eagerly". Watson (1939) corroborated the preference of Phereoeca uterella for woolen goods of all kinds. Aiello (1979) succeeded in rearing specimens of the related species Phereoeca allutella by offering them dead mosquitoes and her own hair.

Gestion (Retour en haut)

Due to its food habits the household casebearer is a potential household pest. However, regular cleaning practices, increased use of air conditioning in houses, and reduced number of woolen goods in this part of the country, along with pesticide application in cracks and crevices for household pest control, have decreased the incidence of the household casebearer. Manual picking or vacuuming of cases and spider web removal should be enough to keep this species under control.

A braconid wasp, Apanteles carpatus (Say), parasitizes larvae of case-bearing moths, killing the larva before pupation. In Florida, this braconid and an ichneumonid wasp, Lymeon orbum (Say), were reared from the household casebearer (Hetrick 1957).

Références sélectionnées (Retour en haut)

  • Aiello A. 1979. Life history and behavior of the case-bearer Phereoeca allutella (Lepidoptera: Tineidae). Psyche 86: 125-136.
  • Arnett Jr RH. 2000. American Insects: A Handbook of the Insects of America North of Mexico. CRC Press. Boca Raton. 1003 pp.
  • Borror DJ, Triplehorn CA, Johnson NF. 1989. An Introduction to the Study of Insects. Harcourt Brace Jovanovich College Publishers. New York. 875 p.
  • Bosik JJ, et al. 1997. Common Names of Insects & Related Organisms. Entomological Society of America. 232 pp.
  • Busck A. 1933. Microlepidoptera of Cuba. Entomologica Americana 13: 151-203.
  • Creighton JT. 1954. Household Pests. Bulletin No. 156, new series. State of Florida, Department of Agriculture, Tallahassee. pp. 39-43.
  • Hetrick LA. 1957. Some observations on the plaster bagworm, Tineola walsinghami Busck (Lepidoptera: Tineidae). Florida Entomologist 40: 145-146.
  • Hinton HE. 1956. The larvae of the species of Tineidae of economic importance. Bulletin of Entomological Research 47: 251-346.
  • Hinton HE, Bradley JD. 1956. Observations on species of Lepidoptera infesting stored products. XVI: Two new genera of clothes moths (Tineidae). The Entomologist 89: 42-47.
  • Kea JW. 1933. Food habits of Tineola uterella. Florida Entomologist 17: 66.
  • Watson JR. 1939. Control of four household insects. University of Florida, Agricultural Experiment Station Bulletin 536.
  • Watson JR. 1946. Control of three household insects. University of Florida, Agricultural Experiment Station Bulletin 619.

Authors: Juan A. Villanueva-Jiménez and Thomas R. Fasulo, University of Florida
Photographs: Juan A. Villanueva-Jiménez and Lyle J. Buss, University of Florida
Conception Web : Don Wasik, Jane Medley
Publication Number: EENY-3
Publication Date: September 1996. Latest revision: April 2017. Reviewed: June 2020.

Une institution de l'égalité des chances
Rédactrice et coordonnatrice des créatures en vedette : Dr. Elena Rhodes, Université de Floride


Complete Metamorphosis Examples

Complete metamorphosis examples cover a wide range of insect orders. The majority of holometabolous insects have ailes, although there are groups which feature wingless adults. The best-known holometabolous insects are those included in the orders Lépidoptères (butterflies and moths) and Coléoptères (beetles).

Other orders that feature holometaboly are Diptères (flies), Neuroptères (including lacewings, alderflies and mayflies), Siphonaptera (fleas), and Hyménoptères (ants, bees and wasps). Those species that do not undergo complete metamorphosis and present as nymphs (using the processes involved in incomplete metamorphosis) have their own orders.

The production of wings is an expensive process in terms of energy, and the production of a female adult which much resembles the larval form and without wings does, on occasion, occur. This phenomenon is called neoteny or juvenilization. Examples are the female trilobite beetle or bagworm moth. However, neotenic insects all go through the four stages of complete metamorphosis.

What Are Hypermetamorphic Insects?

On the other end of the scale, some insects have very distinct-looking stade forms in the larval stage. These additional changes within the normal complete metamorphosis process are found in hypermetamorphic insects of the Strepsiptera orders, as well as in various parasitic wasp, beetle, fly, and mantis-fly species. In relation to non-hypermetamorphic insects, the earliest versions of parasitic instars are very mobile and very small, making it much easier for them to find hosts.


Eastern Tent Caterpillar

The eastern tent caterpillar, Malacosoma americanum, is a pest native to North America. Populations fluctuate from year to year, with outbreaks occurring every several years. Defoliation of trees, building of unsightly silken nests in trees, and wandering caterpillars crawling over plants, walkways, and roads cause this insect to be a pest in the late spring and early summer. Eastern tent caterpillar nests are commonly found on wild cherry, apple, and crabapple, but may be found on hawthorn, maple, cherry, peach, pear and plum as well.

Figure 1. An eastern tent caterpillar.

While tent caterpillars can nearly defoliate a tree when numerous, the tree will usually recover and put out a new crop of leaves. In the landscape, however, nests can become an eyesore, particularly when exposed by excessive defoliation. The silken nests are built in the crotches of limbs and can become quite large.

Larvae cause considerable concern when they begin to wander to protected places to pupate. Frequently they are seen crawling on other types of plants, walkways, and storage buildings. They are a nuisance and can create a mess when they are squashed on driveways, sidewalks, and patios. But keep in mind that no additional feeding or damage is done by the wandering caterpillars.

Insecticides are generally ineffective against mature larvae.

Eastern tent caterpillar nests are frequently confused with fall webworm nests. Unlike the tent caterpillar, fall webworm nests are located at the ends of the branches and their loosely woven webs enclose foliage while the tents of the eastern tent caterpillar do not. While there may be some overlap, fall webworm generally occurs later in the season.

La biologie

The eastern tent caterpillar overwinters as an egg, within an egg mass of 150 to 400 eggs. These masses are covered with a shiny, black varnish-like material and encircle branches that are about pencil-size or smaller in diameter.

Figure 2. Eastern tent caterpillar egg masses are wrapped around small twigs.

The caterpillars hatch about the time the buds begin to open, usually in early March. These insects are social caterpillars from one egg mass stay together and spin a silken tent in a crotch of a tree. Caterpillars from two or more egg masses may unite to form one large colony. During the heat of the day or rainy weather, the caterpillars remain within the tent. They emerge to feed on leaves in the early morning, evening, or at night when it is not too cold.

Figure 3. An eastern tent caterpillar nest.

The larvae are hairy caterpillars, black with a white stripe down the back, brown and yellow lines along the sides, and a row of oval blue spots on the sides. As the larvae feed on the foliage, they increase the size of the web until it is a foot or more in length. In 4 to 6 weeks the caterpillars are full grown and 2 to 2-1/2 inches long. At this time, they begin to wander away individually from the nest in search of protected areas to spin a cocoon. The cocoon is about 1 inch long and made of closely woven white or yellowish silk and is attached to other objects by a few coarser threads.

Figure 4. An adult male eastern tent moth.

The adult moth emerges from the cocoon about 3 weeks later. The moth is reddish-brown with two pale stripes running diagonally across each forewing. Moths mate and females begin to lay eggs on small branches. The eggs will hatch next spring. There is just one generation per year.

La gestion

  • Natural enemies play an important role in reducing eastern tent caterpillar numbers in most years. Caterpillars are frequently parasitized by various tiny braconid, ichneumonid, and chalcid wasps. Several predators and a few diseases also help to regulate their populations. This, in part, accounts for the fluctuating population levels from year to year.
  • Prevention and early control is important. Removal and destruction of the egg masses from ornamentals and fruit trees during winter greatly reduces the problem next spring. In the early spring, small tents can be removed and destroyed by hand. Larger tents may be pruned out and destroyed or removed by winding the nest upon the end of a stick. Burning the tents out with a torch is not recommended since this can easily damage the tree.
  • Young caterpillars can be killed by applying an insecticide containing Bacillus thuringiensis var kurstaki. Other insecticides include carbaryl, and malathion. Larvae within the tents are protected beneath the webbing and are more difficult to kill with an insecticide.

AVERTIR! Les recommandations de pesticides dans cette publication sont enregistrées pour une utilisation dans le Kentucky, aux États-Unis UNIQUEMENT ! L'utilisation de certains produits peut ne pas être légale dans votre état ou pays. Veuillez vérifier auprès de l'agent de votre comté local ou du responsable de la réglementation avant d'utiliser tout pesticide mentionné dans cette publication.

Bien sûr, TOUJOURS LIRE ET SUIVRE LES INSTRUCTIONS SUR L'ÉTIQUETTE POUR UNE UTILISATION SÉCURITAIRE DE TOUT PESTICIDE !


Qui a besoin d'un corps ? Pas ces larves, qui sont essentiellement des têtes nageuses

Schizocarde californicum comme larve. Au stade larvaire, S. californicum n'est guère plus qu'une tête nageuse. Crédit : Paul Gonzalez, Hopkins Marine Station

L'étudiant diplômé Paul Gonzalez de la station marine Hopkins de l'Université de Stanford est récemment devenu un chasseur, un éleveur et un agriculteur d'un ver marin rare, le tout pour combler une lacune considérable dans notre compréhension du développement des animaux. Il savait que certains animaux passent par un long stade larvaire, une stratégie de développement connue sous le nom de développement indirect, et ce ver rare était sa chance de mieux comprendre ce processus.

Ce que Gonzalez et ses collègues ont découvert, c'est que les vers passent par une phase prolongée avec un peu plus que la tête. Ce travail, publié dans le numéro du 8 décembre de Biologie actuelle, suggère que de nombreux animaux dans l'océan partagent probablement ce stade sans tronc, et cela pourrait même faire la lumière sur le développement biologique des premiers animaux.

"Le développement indirect est la stratégie de développement la plus répandue pour les invertébrés marins et la vie qui a évolué dans l'océan", a déclaré Chris Lowe, auteur principal de l'article et professeur agrégé de biologie. "Cela signifie que les premiers animaux ont probablement utilisé ce genre de stratégies pour devenir des adultes."

La plupart des animaux de recherche que l'on trouve couramment dans les laboratoires, tels que les souris, le poisson zèbre et le ver C. elegans, sont des développeurs directs, des espèces qui ne passent pas par un stade larvaire distinct. Pour comprendre en quoi les développeurs indirects diffèrent de ceux-ci, Gonzalez avait besoin d'étudier un développeur indirect qui était très étroitement lié à un développeur direct bien étudié.

Son meilleur pari était un groupe d'invertébrés marins appelé Hemichordata, car il existe déjà une multitude de travaux de développement moléculaire effectués sur des développeurs directs dans ce groupe. Un défaut de ce plan était que les développeurs indirects de ce phylum étaient rares dans les zones proches de la station.

Sans se laisser décourager, Gonzalez a effectué des relevés de la faune marine jusqu'à ce qu'une étude de 1994 lui donne sa grande chance : Schizocarde californicum, une espèce de ver gland et développeur indirect dans le phylum Hemichordata, était une fois à Morro Bay, à seulement deux heures de route.

En contactant les chercheurs de cet article vieux de plusieurs décennies, Gonzalez a obtenu les coordonnées exactes des vers. Une fois là-bas, il a enfilé une combinaison de plongée, a préparé sa pelle et a commencé sa chasse aux étranges habitants de l'océan.

Schizocarde californicum sous forme de larve, juvénile et adulte. Au stade larvaire, S. californicum n'est guère plus qu'une tête nageuse. Crédit : Paul Gonzalez et Chris Patton, Hopkins Marine Statio

Diversifier l'étude de la diversité

Les développeurs directs sont plus souvent utilisés dans la recherche en grande partie pour des raisons pratiques.

"Les espèces terrestres en développement direct se développent rapidement, leur cycle de vie est simple et elles sont faciles à élever en laboratoire", a déclaré Gonzalez, auteur principal de l'article.

En comparaison, les développeurs indirects se développent lentement, ont un stade larvaire long et leurs larves sont difficiles à nourrir et à maintenir en captivité. Les adultes reproducteurs sont également difficiles à garder en laboratoire et, comme l'a montré Gonzalez, leur collecte peut être un processus ardu. Cependant, la relative facilité d'étudier les développeurs directs a entraîné un manque de diversité dans ce que les scientifiques savent sur l'évolution et le développement, a déclaré Gonzalez.

"En sélectionnant des espèces pratiques, nous sélectionnons un échantillon non aléatoire de la diversité animale, risquant de manquer des choses intéressantes", a-t-il déclaré. "C'est ce qui m'a amené au laboratoire de Lowe. Nous nous spécialisons dans la pose de questions évolutives intéressantes en utilisant la biologie du développement et la génétique moléculaire, et nous n'avons pas peur de repartir de zéro et de travailler sur des animaux avec lesquels personne n'a travaillé auparavant."

Après avoir passé des mois à perfectionner les techniques d'élevage et de reproduction nécessaires à l'étude de ces vers, les chercheurs ont finalement pu séquencer l'ARN à divers stades de développement du ver. Ils ont fait cela afin de voir où des gènes spécifiques sont activés ou désactivés dans un embryon.

Paul Gonzalez, étudiant diplômé à la station marine Hopkins de l'Université de Stanford, ramassant des vers à Morro Bay, en Californie. Crédit : Paul Gonzalez, Hopkins Marine Station

Ils ont découvert que chez les vers, l'activité de certains gènes qui conduiraient au développement d'un tronc est retardée. Ainsi, au stade larvaire, les vers sont essentiellement des têtes nageuses.

"Quand vous regardez une larve, c'est comme si vous regardiez un ver gland qui a décidé de retarder le développement de son tronc, de gonfler son corps en forme de ballon et de flotter dans le plancton pour se nourrir de délicieuses algues", a déclaré Gonzalez. . "Le développement retardé du tronc est probablement très important pour développer une forme corporelle différente de celle d'un ver, et plus adaptée à la vie dans la colonne d'eau."

Au fur et à mesure de leur croissance, les vers glands finissent par se métamorphoser en leur corps adulte. À ce stade, les gènes qui régulent le développement du tronc s'activent et les vers commencent à développer le long corps trouvé chez les adultes, qui atteint finalement environ 40 cm (15,8 pouces) sur plusieurs années.

Même avec un résultat aussi fascinant, cette recherche n'est que le début de l'examen par le laboratoire Lowe des développeurs indirects. Ces vers ne nous parleront jamais des maladies humaines, contrairement au travail avec des cellules souches ou des souris, mais ils pourraient révéler les subtilités du fonctionnement de la vie pour de nombreux organismes au-delà des espèces modèles que nous avons si largement étudiées. Ils peuvent aussi nous montrer comment la vie en général est devenue ce qu'elle est aujourd'hui.

"Compte tenu de l'omniprésence des larves dans le monde animal, nous comprenons très peu de choses sur cette phase critique du développement animal", a déclaré Lowe. "Ce ne sont pas le genre d'espèces que vous voulez choisir si vous voulez des connaissances approfondies et mécanistes de la biologie du développement. Mais, si votre objectif est de comprendre comment les animaux ont évolué, alors vous ne pouvez pas éviter d'utiliser ces espèces."

Ensuite, les chercheurs veulent comprendre comment se produit le retard de développement du corps du ver gland. Ils ont également commencé à séquencer le génome de S. californicum.

Kevin R. Uhlinger, directeur de laboratoire au laboratoire Lowe de la station marine de Hopkins, est également co-auteur de cet article. Chris Lowe est également membre de Stanford Bio-X et du Stanford Neurosciences Institute.


Voir la vidéo: Survivre dans la forêt sauvage, les larves de noix de coco manger (Mai 2022).